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克隆文库的构建通常是以一个识别4个碱基序列的限制酶(这些酶切割频率相对较高，平均每256碱基对有1个切点)不完全消化基因组DNA完成的。酶Sau3AI识别序列是5'-\GATC-3'(只写上面一条链，\表示切割位点)。这个位点有一个优点，即Sau 3AI消化片段可被克隆入以BamHI(5'-G\GATC-3')或BglⅡ(5'-A\GATCT-3')消化的载体上。图16-3-17是YFG1基因周围Sau3AI位点的限制性图谱，请列出以Sau3AI完全消化这个片段得到限制性片段的大小，以及不完全Sau3AI消化时产生片段的大小。如果分离一个包含完整YFGl基因的片段，以不完全消化建立文库的重要性在哪里呢？
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利用简单重复序列(SSR)作探针从文库中分离出几个克隆。现在要鉴定与这些重复序列毗邻的单一序列，以期在基因组中建立基于SSR的STS。 (1)如何鉴定分离出的克隆中是否有单一序列？ (2)最有用的STS是那些与人群中存在多态性的SSR相连的STS。如何鉴定一个STS是否与多态性的SSR相连？
人类基因组DNA经过Sau3A(G↓ATC)部分酶切后，连接到载体pCU999的BamHⅠ位点上 (G↓GATCC)。BamHⅠ位于多克隆位点的SalⅠ和NotⅠ之间，二者距离20 bp。 (1)从文库中分离出某克隆(克隆1)，分别用NotⅠ(N)、SalⅠ(S)或SalⅠ十NotⅠ(S十N)酶切后，电泳分离并用EB染色。DNA转移到膜上后，用载体上的DNA作为探针进行杂交，结果如下图所示：
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假设同源序列50 bp以下则无杂交信号。在此基因组DNA上标上所有的SalⅠ和NotⅠ位点，标明酶切位点间距离。 (2)从同样的文库中分离到带有重叠片段的克隆(克隆2)，用同样的酶切、电泳、转膜后，以克隆1的DNA为探针(包括基因组DNA和载体DNA)进行southern杂交，结果如下图所示：
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画出克隆2的图，标明所有SalⅠ和NotⅠ位点及位点间距离。 (3)所有的人类基因组DNA都用SalⅠ酶切，并用来自于克隆1或克隆2的DNA为探针作Southern杂交，结果如下图所示：
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其中6个SalⅠ切点的位置可以用以上的结果来确定。请画出这一区域的SalⅠ位点图。
同源区蛋白与锌指蛋白有很大的不同，但这两个家族都使用一个类似结构的保守基序(motif)。这是怎么回事？
